Wie das Mischen von Drohnensperma die Spermienqualität beeinflusst: eine Vorstudie
Vorwort
Nach der Paarung vermischen sich Spermien mehrerer Drohnen von Apis mellifera in der Spermatheka der Königin. Ihr Verhalten dort ist für die langfristige Lebensfähigkeit und die erfolgreiche Befruchtung von Bedeutung. Die Mehrfachpaarung der Honigbiene könnte zudem ermöglichen, dass kryptische Weibchenwahl und Spermienkonkurrenz bestimmte für die Fortpflanzung günstige Merkmale begünstigen. Kryptische Weibchenwahl bezeichnet Mechanismen, über die ein Weibchen nach der Paarung beeinflussen kann, welche Spermien zur Befruchtung beitragen, etwa durch die unterschiedliche Speicherung oder Abgabe von Spermien verschiedener Männchen.
Diese Vorstudie erfasste mehrere Qualitätsmerkmale von Spermien in gemischtem Drohnensperma. Die Forschenden gewannen 31 Ejakulate und teilten sie auf, um Proben mit Sperma von einer, zwei oder drei Drohnen herzustellen. Sie analysierten die Spermien computergestützt zu Beginn und nach 60 Minuten. In Proben von zwei Drohnen sank die Gesamtmotilität signifikant (p = 0,004). Proben von drei Drohnen wiesen anfangs tendenziell niedrigere Werte für Motilität und Kinematik auf, ohne signifikante Unterschiede zwischen den Gruppen bei diesen Ausgangswerten. Nach einer Stunde stiegen nur in dieser Gruppe die progressive Motilität, die Schwimmgeschwindigkeit und die kinematischen Werte. Die Spermienkonzentration korrelierte mit den meisten funktionellen Merkmalen, die morphometrischen Maße hingegen nicht. Die beobachteten Veränderungen könnten auf das Zusammenwirken der Mischung, der Spermienkonzentration und der Zeit für mögliche Wechselwirkungen zwischen Spermien zurückgehen.
Einleitung
Bei polyandrischen Insekten paart sich ein Weibchen mit mehreren Männchen und erhält von jedem Sperma. Bei Hautflüglern kann dies die genetische Vielfalt erhöhen und Gesundheit und Fitness des Volkes fördern. Die Honigbiene (Apis mellifera) ist ein Beispiel für ausgeprägte Polyandrie. In manchen Populationen kann sich eine Königin mit bis zu 77 Drohnen paaren (Withrow und Tarpy 2018; Delaplane et al. 2021). Mit der Mehrfachpaarung werden leistungsfähigere und produktivere Arbeiterinnen, effizientere Nahrungssuche, höheres Überleben der Brut und größere Völker in Verbindung gebracht (Mattila und Seeley 2007; Delaplane et al. 2021). Mehrfachpaarungen können zudem das Risiko verringern, dass die Königin ihren Spermienvorrat aufbraucht (Delaplane et al. 2021). Dadurch kann sie genügend Spermien mit Merkmalen erhalten, die eine langfristige Befruchtung begünstigen. Die Kap-Honigbiene A. m. capensis hat kleinere Drohnen mit geringeren Spermienzahlen und Königinnen mit einer größeren Spermatheka als europäische Unterarten wie A. m. carnica. Möglicherweise sind daher mehr Paarungen nötig, um einen lebenslangen Spermienvorrat aufzubauen (Kraus et al. 2004).
Die Aufnahme zahlreicher Spermien von mehreren Männchen kann helfen, einen ausreichenden Vorrat lebensfähiger Spermien zu sichern. Anders als Königinnen paaren sich Drohnen nur einmal. Nach der Paarung hängt das Überleben der Spermien von den Bedingungen in der Königin ab (den Boer et al. 2010). Etwa 4–6 Millionen Spermien erreichen die Spermatheka und werden dort gespeichert. Nach den zitierten Schätzungen sind das rund 3–5 % aller übertragenen Spermien und 5–10 % des Beitrags einer einzelnen Drohne. Die übrigen Spermien werden über die Begattungstasche (Bursa copulatrix) ausgeschieden (Baer 2005; Gençer und Kahya 2020; Liu et al. 2020; Gençer et al. 2014). Schätzungsweise 1–1,6 Millionen Spermien werden in den folgenden Jahren zur Befruchtung von Eiern verwendet (Baer 2005). Die Spermien müssen über diese Zeit lebensfähig bleiben, weshalb ihre Qualität wichtig ist (Baer 2003; Stürup et al. 2013). Daher wurde die Spermienkonkurrenz bei Honigbienen untersucht (Moritz 1986; Woyciechowski und Król 1996; Shafir et al. 2009). Konkurrenz zwischen Männchen und kryptische Weibchenwahl können den Fortpflanzungserfolg vor oder nach der Paarung beeinflussen.
Nach der Paarung wurde Spermienkonkurrenz sowohl in den Eileitern als auch in der Spermatheka vermutet (Gençer und Kahya 2020). Sie könnte auch auftreten, wenn Spermien die Spermatheka verlassen, ihren Ausführgang passieren und ein Ei erreichen (Harbo 1990). Bei polyandrischen Arten kann Spermienkonkurrenz Merkmale begünstigen, die zur Befruchtung beitragen (Pearcy et al. 2014). Dazu zählen progressive Motilität, Schwimmgeschwindigkeit, Lebensfähigkeit, Morphologie und Maße wie Kopf-, Geißel- und Gesamtlänge (Fitzpatrick und Lüpold 2014; Pearcy et al. 2014). Die Spermienkinematik von Insekten ist bislang wenig untersucht. Häufige Messgrößen sind kurvilineare Geschwindigkeit (VCL), geradlinige Geschwindigkeit (VSL), Geschwindigkeit entlang der gemittelten Bahn (VAP), Linearität (LIN), Geradlinigkeit (STR), Schwankungsmaß (WOB), Amplitude der seitlichen Kopfauslenkung (ALH) und Bahnkreuzungsfrequenz (BCF) (Lu et al. 2014; WHO 2021). Systeme zur computergestützten Spermienanalyse (CASA) verfolgen meist den Spermienkopf und werden häufig bei Säugetieren eingesetzt (Hook und Fisher 2020; WHO 2021). Die viel kleineren Köpfe und langen Geißeln von Insektenspermien erschweren eine detaillierte Verfolgung.
Nach der Paarung vermischen sich die Spermien der Honigbiene (Borsuk et al. 2018) und bilden dichte Bündel in der Spermatheka (Wegener et al. 2014). Nach mehreren Stunden können Gruppen entstehen, die im Kreis schwimmen (Tofilski et al. 2018). Solche Verhaltensänderungen könnten auf Wechselwirkungen oder Kooperation zwischen Spermien hindeuten, die bei Insekten zur Befruchtung beitragen können (Lüpold et al. 2012; Pearcy et al. 2014). Bei manchen Insekten kann die Kooperation zwischen Spermien ihre Motilität und Geschwindigkeit verändern und die Wanderung im Fortpflanzungstrakt erleichtern (Pizzari und Foster 2008; Lüpold et al. 2012; Pearcy et al. 2014; Liberti et al. 2018). Eine höhere Motilität und Geschwindigkeit könnte jedoch die Lebensfähigkeit beeinträchtigen, die bei der langfristigen Speicherung wichtig ist.
Die Bewegung der Spermien erfordert Energie und geht mit einem erhöhten Stoffwechsel einher. Mitochondrien bilden Adenosintriphosphat (ATP) und reaktive Sauerstoffspezies (ROS), die an der Regulation der Bewegung beteiligt sein können. Übersteigt die Bildung von ROS die antioxidative Kapazität der Zellen, kann oxidativer Stress die Struktur und Funktion der Spermien schädigen und schließlich zum Zelltod führen (Reinhardt 2007; Abdelkader et al. 2018). Beispielsweise erhöhte die Exposition gegenüber Insektiziden bei adulten Drohnen in vivo sowie bei Honigbienenspermien in vitro die Stoffwechselaktivität, gemessen anhand einer erhöhten ATP-Produktion. In beiden Studien nahm auch die Spermiensterblichkeit zu und die Lebensfähigkeit ab (Abdelkader et al. 2015, 2018).
In den meisten In-vitro-Studien hatte das Mischen von Drohnensperma keinen erkennbaren Einfluss auf die Lebensfähigkeit der Spermien (Shafir et al. 2009; Tofilski et al. 2012; Gençer et al. 2014). In den ersten vier Stunden schien die Lebensfähigkeit in den seitlichen Eileitern und der Spermatheka ähnlich zu sein. In diesem Zeitraum wandern bei instrumentell besamten Königinnen besonders viele Spermien zur Spermatheka (Gençer und Kahya 2011). Arbeiten über das Mischen von Sperma mehrerer Drohnen während und nach der Paarung haben sich vor allem mit Schwimmmustern und Lebensfähigkeit befasst. Welche strukturellen und funktionellen Eigenschaften für die Befruchtung besonders günstig sind, bleibt offen.
Bei monandrischen Hautflüglern, darunter die meisten Hummeln und Solitärbienen, paart sich das Weibchen mit einem Männchen (Baer 2003). Bei manchen Arten bilden die Männchen einen Begattungspfropf, der weitere Paarungen erschwert. Dadurch können Spermien eines einzigen Männchens die Spermatheka erreichen, ohne mit denen anderer Männchen in Kontakt zu kommen. Spermienkonkurrenz im weiblichen Fortpflanzungstrakt ist dann weniger wahrscheinlich (Baer et al. 2006; Strobl et al. 2019).
Diese Vorstudie untersuchte die Spermienqualität von Drohnen der Unterart A. m. capensis und den möglichen Einfluss von Sperma mehrerer Drohnen auf das Verhalten und die Qualität der Spermien. Dazu wurden Einzelproben und Mischproben in vitro verglichen. Zunächst wurde geprüft, ob das Mischen die Motilität oder kinematische Messgrößen verändert. Anschließend wurde untersucht, ob strukturelle Maße der Spermien mit ihrer Funktion oder ihrem Verhalten zusammenhängen.
Material und Methoden. Siehe Originalartikel.
Ergebnisse
Die Studie untersuchte funktionelle und strukturelle Spermienmerkmale nach dem Mischen von Drohnensperma in vitro. Tofilski et al. (2018) berichteten zuvor über zeitliche Veränderungen der Spermienbewegung in der Spermatheka von Königinnen nach instrumenteller Besamung und natürlicher Paarung. In den ersten acht Stunden war kaum Vorwärtsbewegung sichtbar. Nur ein kleiner Teil der Spermien bewegte sich rasch vorwärts. Nach 16 Stunden beobachteten die Forschenden koordinierte Kreisbewegungen und Gruppen langsam im Kreis schwimmender Spermien. Die vorliegende Untersuchung endete nach 60 Minuten. In den Mischproben bewegten sich die meisten Spermien langsam und nicht progressiv, einige Gruppen schwammen im Kreis. Die Gesamtmotilität war anfangs bei Einzelproben und Proben von zwei Drohnen am höchsten. In den Proben von zwei Drohnen sank sie bis Minute 60 deutlich, in den Proben von drei Drohnen weniger stark.
Borsuk et al. (2011) beobachteten bei der Mischung von Sperma zweier geschlechtsreifer A.-m.-carnica-Drohnen zunächst eine hohe Aktivität, die später abnahm. Den Beobachtungsabstand gaben sie nicht an. Bei der Blattschneiderameise Acromyrmex echinatior steigerte die eigene Samenflüssigkeit die Spermienmotilität nur mäßig, was möglicherweise die Lebensfähigkeit schont. Die Mischung mit Samenflüssigkeit eines Rivalen erhöhte die Motilität stärker (Liberti et al. 2018). Die Gesamtmotilität umfasst progressiv (PR) und nicht progressiv (NP) bewegliche Spermien. In Proben von zwei Drohnen sank der Anteil nicht progressiver und langsam schwimmender Spermien, ohne dass der Anteil progressiver oder schneller Spermien entsprechend zunahm. Stattdessen stieg der Anteil unbeweglicher Spermien gegenüber dem Ausgangswert um mehr als 50 %, während die Gesamtmotilität abnahm. Die Mischung von Sperma zweier verwandter Drohnen könnte daher in diesem Versuch die Qualität beeinträchtigt haben. Schäden an der Zellmembran könnten den Verlust von Stoffen wie ATP begünstigen, die für die Bewegung nötig sind. Sinkt der ATP-Gehalt, können Spermien weniger beweglich oder unbeweglich werden.
Superoxiddismutase (SOD) wirkt als Antioxidans und trägt zum Überleben und zur Motilität der Spermien bei. Daher gilt: Wenn die Bildung reaktiver Sauerstoffspezies die antioxidative Kapazität des Spermas übersteigt, kann oxidativer Stress die Funktion der Spermien beeinträchtigen (Reinhardt 2007; Abdelkader et al. 2014, 2018). Oxidativer Stress könnte daher die Spermien in den Proben von zwei Drohnen beeinträchtigt haben. Die Lebensfähigkeit wurde im Zeitverlauf nicht gemessen. Deshalb bleibt offen, ob mit dem Anteil unbeweglicher Spermien auch der Anteil abgestorbener Spermien anstieg. Den Boer et al. (2010) untersuchten Spermien aus den Samenblasen von sechs Insektenarten, darunter Honigbienen und die Blattschneiderameisen Atta colombica und Acromyrmex echinatior. In der eigenen Samenflüssigkeit überlebten die Spermien besser. In der Samenflüssigkeit eines verwandten oder nicht verwandten Männchens derselben Art nahm ihr Überleben ab.Die Autoren vermuteten, dass die Samenflüssigkeit Stoffe mit gegensätzlichen Wirkungen enthält. Manche könnten die Spermien anderer Männchen beeinträchtigen, andere das Überleben von Spermien fördern. Shafir et al. (2009) mischten Sperma von zwei nicht verwandten Drohnen und lagerten die Proben vier Tage bei 25 °C. In den Mischproben war die Lebensfähigkeit der Spermien etwas höher als in den Einzelproben, der Unterschied war aber statistisch nicht signifikant. Tofilski et al. (2012) fanden bei der Untersuchung nach der Gewinnung keinen Unterschied in der Lebensfähigkeit.
In anderen Untersuchungen war die Lebensfähigkeit bei einer Mischung aus dem Sperma von vier Drohnen deutlich geringer (unter 50 %) als in Einzelproben (Collins 2004). Beim Mischen von Sperma von fünf bis acht Drohnen (Collins 2003) oder acht bis zehn Drohnen (Gençer et al. 2014) änderte sich die Lebensfähigkeit dagegen nicht. Tofilski et al. (2012) fanden zudem mehr Partikel in Proben von zwei Drohnen und vermuteten einen Zusammenhang mit Spermienkonkurrenz, bei der die Samenflüssigkeit einer Drohne eine Gerinnung auslösen und dadurch die Spermien einer anderen Drohne unbeweglich machen könnte. Im vorliegenden Versuch gerannen die Proben nicht. Die Unterschiede zwischen den Studien könnten auf verschiedene Methoden der Gewinnung, Lagerung und Aufbereitung zurückgehen, bei denen Spermien geschädigt werden können (Collins 2004; Shafir et al. 2009; Gençer et al. 2014).
Auch zwischen einzelnen Drohnen kann die Lebensfähigkeit der Spermien variieren (Collins 2004). Mit einer geringeren Lebensfähigkeit wurden weitere Faktoren in Verbindung gebracht, darunter das Alter der Drohnen. Auch Jahreszeit, das Angebot an Blütenressourcen und insbesondere die Belastung durch Parasiten und Pflanzenschutzmittel können eine Rolle spielen (Rangel und Fisher 2019; Yániz et al. 2020; Morais et al. 2022).Auch die Stärke des Varroabefalls im Volk und die zur Bekämpfung der Milbe eingesetzten Akarizide kommen als Einflussfaktoren auf die Lebensfähigkeit der Drohnenspermien infrage (Collins 2004; Rinderer et al. 1999). Der Varroabefall der Völker wurde in dieser Studie nicht bestimmt. Die höhere Lebensfähigkeit der Spermien in der Spermatheka im Vergleich zu Ejakulaten deutet darauf hin, dass die Lebensfähigkeit beeinflussen könnte, welche Spermien gespeichert werden (Lodesani et al. 2004).
Die Lebensfähigkeit der Spermien ist sowohl bei der Drohne als auch bei der Königin wichtig. Die Mechanismen, die sie erhalten, scheinen sich jedoch zu unterscheiden. Beispielsweise unterscheiden sich die Mengen stoffwechselrelevanter Proteine, darunter Enzyme, zwischen Spermatheka- und Samenflüssigkeit erheblich. Die Spermathekaflüssigkeit enthält mehr Stoffe, die das Überleben der Spermien fördern (Collins et al. 2006; Baer et al. 2009). Eine dichte Packung der Spermien in der Spermatheka könnte ihre Lebensfähigkeit erhalten, indem sie die Verdünnung begrenzt und dadurch osmotischen Stress und die endogene Atmung verringert. Dies kann die Stoffwechselaktivität dicht gepackter Spermien senken (Reinhardt 2007). In der Spermatheka kann eine eingeschränkte Spermienmotilität zur Erhaltung der Lebensfähigkeit beitragen. Die Natrium- und Kaliumkonzentrationen sind in der Spermathekaflüssigkeit deutlich höher als im Drohnensperma, was die Motilität senken könnte (Verma 1973). Unbewegliche Spermien scheinen bei älteren Königinnen häufiger zu sein, wenn Spermienzahl und Hypertonizität geringer sind (Al-Lawati et al. 2009). Allerdings könnte eine geringere Lebensfähigkeit der Spermien in Mischproben für die instrumentelle Besamung besonders relevant sein, da die Lebensfähigkeit bei instrumentell besamten Königinnen im Laufe der Zeit stärker abnehmen kann als bei natürlich begatteten Königinnen (Tarpy und Olivarez 2014; Lodesani et al. 2004). Der Verlust lebensfähiger Spermien kann die Fortpflanzung beeinträchtigen und dazu führen, dass eine Königin schließlich unbefruchtete Eier legt, aus denen Drohnen schlüpfen. Eine Studie zeigte jedoch, dass Königinnen nach instrumenteller Besamung mit Sperma, in dem 42,6 % der Spermien lebensfähig waren, noch ausreichend befruchtete Eier legen konnten (Collins 2000).
Anders als bei den Proben von zwei Drohnen schien das Mischen von Sperma dreier Drohnen die Bewegung der Spermien im Zeitverlauf zu verbessern. In dieser Gruppe sanken die Anteile nicht progressiv beweglicher und langsam schwimmender Spermien, während die Anteile progressiv beweglicher und schneller schwimmender Spermien stiegen. Die meisten Werte lagen anschließend höher als in Einzelproben und Proben von zwei Drohnen. Außerdem stiegen nur in dieser Gruppe alle erfassten kinematischen Werte im Zeitverlauf, wenn auch ohne statistische Signifikanz. Die Zunahmen waren bei VSL, LIN und STR am deutlichsten. LIN wird aus VSL und VCL berechnet, STR aus VSL und VAP. Bei Honigbienen wurde eine höhere Gesamtmotilität mit mehr progressiv und schnell beweglichen Spermien sowie höheren Werten für VCL, VSL, VAP, LIN und STR in Verbindung gebracht. Dies galt für Einzelproben aus Samenblasen und aus Ejakulaten (Inouri-Iskounen et al. 2020; Murray et al. 2022). Die Autoren vermuten, dass Spermienkonzentration, mögliche Kooperation zwischen Spermien und die verstrichene Zeit gemeinsam zu den Veränderungen in den Proben von drei Drohnen beitrugen. In diesen Proben war die Spermienkonzentration höher und korrelierte positiv mit funktionellen Messgrößen.
Eine höhere Spermienkonzentration könnte die Viskosität erhöhen und die Bewegung beeinflussen, wie Beobachtungen in der Spermatheka nahelegen (Tofilski et al. 2018). Al-Lawati et al. (2009) vermuteten, dass die Hypertonizität in der Spermatheka zur Kreisbewegung beitragen könnte. Die Autoren halten es für möglich, dass die Hypertonizität auch in den stärker konzentrierten Proben von drei Drohnen höher war. Bei einer Buckelfliege und einer Wüstenameise wurden höhere Schwimmgeschwindigkeiten in viskoseren Medien gemessen (Curtis und Benner 1991; Pearcy et al. 2014). Eine höhere Konzentration könnte zudem Wechselwirkungen zwischen Spermien begünstigen. Bei der eusozialen Wüstenameise Cataglyphis savignyi bilden Dutzende Spermien Bündel, die 50 % schneller schwimmen als einzelne Spermien. Eine solche Kooperation könnte den Anteil eines Männchens an den Spermien erhöhen, die die Spermatheka erreichen und dort gespeichert werden (Pearcy et al. 2014).
Veränderungen der Bewegung von Drohnenspermien wurden auch mit der Zeit zwischen den Beobachtungen in Verbindung gebracht. In dieser Zeit können sich stabile Bewegungsmuster ausbilden (Tofilski et al. 2018; Yániz et al. 2019). Die Bedingungen im Fortpflanzungstrakt und in der Spermatheka der Königin unterscheiden sich von denen im Ejakulat.Nach erfolgreicher Paarung oder Besamung wird nur ein Teil der Spermien gespeichert. Woyciechowski und Król (1996) stellten fest, dass die gespeicherte Zahl nicht davon abhing, von wie vielen Drohnen das für die instrumentelle Besamung verwendete Sperma stammte. Bei A. m. capensis scheinen Königinnen etwa 3 bis 11 Millionen Spermien in einer Spermatheka mit einem Volumen von rund 1 µL zu speichern. Die Konzentrationen aller Versuchsgruppen lagen in diesem Bereich. Wie sich solche Unterschiede auf die Bewegung in der Spermatheka auswirken, ist unbekannt. Die Streuung der Spermienkonzentrationen entspricht früheren Befunden für dieselbe Unterart (Murray et al. 2022). Die Spermien von A. m. capensis scheinen kürzer zu sein als die anderer Unterarten wie A. m. carnica, was ihre Bewegung beeinflussen könnte (Gontarz et al. 2016). In der Spermatheka sind Spermien zudem der Spermathekaflüssigkeit ausgesetzt und stärker auf anaeroben Stoffwechsel angewiesen als im Ejakulat (Liu et al. 2020). Die Spermienlänge kann bei Insekten die Funktion und Motilität beeinflussen (Fitzpatrick und Lüpold 2014). Bei Drosophila schwimmen längere Spermien beispielsweise langsamer als kürzere, widerstehen aber eher der Ausscheidung aus dem weiblichen Fortpflanzungstrakt (Lüpold et al. 2012).
Im vorliegenden Versuch unterschieden sich die Spermienmaße zwischen den drei Gruppen nicht und korrelierten nicht mit der Motilität. Bei der Wespe Dahlbominus fuscipennis kommen fünf Spermientypen in den Samenblasen der Männchen vor, während die Spermatheken einheitlich groß sind (Lee und Wilkes 1965). Bei Honigbienen wurde eine jahreszeitliche Veränderung der Spermienmaße beschrieben (Gontarz et al. 2016). Ob die nach der Paarung in der Spermatheka gespeicherten Spermien verschiedene Formen aufweisen, ist noch offen. Die kürzeren Spermien von A. m. capensis könnten sich anders bewegen als die längeren Spermien anderer Unterarten. Eine Einschränkung der Studie ist, dass die Körpergröße der Drohnen nicht gemessen wurde. Frühere Arbeiten brachten sie mit der Konzentration oder der Spermienzahl pro Ejakulat (Schlüns et al. 2003; Bratu et al. 2022) und mit abweichend geformten Spermien in Verbindung (Bratu et al. 2022). Frühere Laborversuche der Autoren deuteten allerdings nicht auf einen nachteiligen Einfluss des Körpergewichts auf die Spermienkonzentration hin.
Schlussfolgerungen
Unterschiede in Motilität und Kinematik könnten auf das Zusammenwirken von Spermamischung, Spermienkonzentration und zeitlichen Veränderungen ihrer Anordnung zurückgehen. Eine genetische Ursache wurde in der Studie nicht nachgewiesen. Bei der Mischung in vitro entfällt der mögliche Einfluss der Königin darauf, welche Spermien nach der Paarung genutzt werden, einschließlich der kryptischen Weibchenwahl. Bei natürlicher Paarung wird nur ein Teil der aufgenommenen Spermien gespeichert. Neben Umwelteinflüssen kann die Qualität der Drohnenspermien über Veränderungen nach der Paarung die Gesundheit und Fortpflanzung der Königin sowie die Gesundheit und Leistung des Volkes beeinflussen (Brutscher et al. 2019).
Die Ergebnisse können für Programme zur instrumentellen Besamung und für die Imkerei relevant sein. Konzentration, Motilität und Lebensfähigkeit helfen, die Qualität einer Mischprobe vor der Besamung zu beurteilen. Ihre Eignung als Indikatoren für die spätere Gesundheit der Königin und des Volkes bedarf weiterer Untersuchungen. Um die Ursachen für die Veränderungen nach dem Mischen zu klären, schlagen die Autoren vor, verschiedene Spermienkonzentrationen zu prüfen, reaktive Sauerstoffspezies und die Mitochondrienfunktion zu messen und Spermienmerkmale in der Spermatheka der Königin zu untersuchen. Für den routinemäßigen Einsatz in der Imkerei wären zudem einfache und kostengünstige Verfahren zur Beurteilung von Drohnensperma nötig.
Autoren
Retha CM Kotzé (Department of Medical Bioscience, University of the Western Cape, Bellville, Südafrika)
Gerhard van der Horst (Department of Medical Bioscience, University of the Western Cape, Bellville, Südafrika)
Janice F Murray (Department of Medical Bioscience, University of the Western Cape, Bellville, Südafrika)
Anja Duminy (Department of Medical Bioscience, University of the Western Cape, Bellville, Südafrika, und Applied Research Centre, Langara College, Vancouver, Kanada)
Mike Allsopp (Honey Bee Research Section, ARC-Plant Protection Research Institute, Stellenbosch, Südafrika)
African Entomology, 2024 · Bearbeitung des zitierten Artikels unter CC BY 4.0 https://doi.org/10.17159/2254-8854/2024/a17135
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